banner
Дом / Блог / Эпигенетическое молчание с помощью комплекса SMC5/6 опосредует ВИЧ
Блог

Эпигенетическое молчание с помощью комплекса SMC5/6 опосредует ВИЧ

Sep 15, 2023Sep 15, 2023

Природная микробиология, том 7, страницы 2101–2113 (2022 г.) Процитировать эту статью

5997 Доступов

2 цитаты

187 Альтметрика

Подробности о метриках

После проникновения вируса и обратной транскрипции провирусы ВИЧ-1, которые не могут интегрироваться, эпигенетически замалчиваются, но основной механизм остается неясным. Используя полногеномный скрининг нокаута CRISPR/Cas9, мы определили комплекс SMC5/6 хозяина как необходимый для этого эпигенетического молчания. Мы показываем, что SMC5/6 связывается и затем SUMOилирует неинтегрированную хроматинизированную ДНК ВИЧ-1. Ингибирование SUMOylation либо путем точечного мутагенеза компонента SMC5/6 NSMCE2 — лигазы SUMO E3, либо с помощью ингибитора SUMOylation TAK-981 предотвращает эпигенетическое молчание, обеспечивает транскрипцию из неинтегрированной ДНК ВИЧ-1 и спасает репликацию дефицитных по интегразе клеток. ВИЧ-1. Наконец, мы показываем, что блокирование экспрессии комплекса SMC5/6 или ингибирование его активности SUMOylation подавляет возникновение латентной инфекции ВИЧ-1 как в линиях CD4+ Т-клеток, так и в первичных Т-клетках человека. В совокупности наши данные показывают, что комплекс SMC5/6 играет непосредственную роль в установлении латентного периода ВИЧ-1 путем эпигенетического подавления интеграционно-компетентных провирусов ВИЧ-1 перед интеграцией.

Интеграция провирусной ДНК в геном клетки-хозяина является определяющей особенностью жизненного цикла ретровируса, которая необходима для транскрипции и репликации провируса1,2. Ингибиторы интегразы (ИН) мощно ингибируют репликацию ВИЧ-13. В отсутствие функциональной IN неинтегрированные провирусы ВИЧ-1 накапливают репрессивные эпигенетические метки, включая триметилирование лизина 9 на гистоне H3 (H3K9me3), и истощают активирующие метки, такие как ацетилирование H3 (H3Ac)4,5. Хотя эпигенетическое подавление транскрипции неинтегрированной ДНК ВИЧ-1, вероятно, представляет собой защиту хозяина от чужеродной ДНК, основные механизмы и клеточные факторы, которые опосредуют этот эффект, остаются не полностью определенными6,7.

В вирусе мышиного лейкоза (MLV) геномный скрининг выявил компоненты комплекса концентратора сайленсинга человека (HUSH), а также ДНК-связывающий белок NP220, которые имеют решающее значение для сайленсинга неинтегрированной ДНК MLV8. Однако последующие работы9,10 не смогли обнаружить никакой роли комплекса HUSH или NP220 в подавлении неинтегрированного ВИЧ-1. Совсем недавно при скрининге 1217 генов человека, активность которых подавляется белком Vpr ВИЧ-1, был выявлен компонент структурного поддержания комплекса хромосомы (SMC) 5/6, фактор локализации комплекса SMC5/6 2 (SLF2), как критический. для неинтегрированного подавления ДНК ВИЧ-1. Этот скрининг также показал, что шесть других компонентов комплекса SMC5/6, включая SMC5 и 6, а также четыре белка, ассоциированные с SMC5/6, не структурно поддерживают элементы хромосом с 1 по 4 (NSMCE1–4), но не SMC5/6. 6, ассоциированный с фактором SLF1, также имели решающее значение для эпигенетического подавления неинтегрированной ДНК ВИЧ-19. Следует отметить, что ранее было показано, что комплекс SMC5/6 разрушается неструктурным белком HBX вируса гепатита B (HBV), а в отсутствие HBX эписомальная ДНК HBV также подвергается эпигенетическому молчанию11,12. Таким образом, комплекс SMC5/6 не только участвует в хромосомной репликации, рекомбинации и репарации13, но также может подавлять инвазивную вирусную ДНК. Здесь мы стремились определить, опосредует ли комплекс SMC5/6 возникновение латентной инфекции ВИЧ-1.

Чтобы идентифицировать факторы, которые транскрипционно подавляют неинтегрированную ДНК ВИЧ-1, мы провели полногеномный нокаутный скрининг CRISPR/Cas914 в линии CD4+ Т-клеток человека CEM-SS. Мы трансдуцировали субклон CEM-SS, который экспрессирует Cas9 Streptococcus pyogenes, с помощью лентивирусной библиотеки, экспрессирующей ~80 000 одиночных направляющих РНК (sgRNA), нацеленных на 19 114 генов человека15. Семь дней спустя мы инфицированы эти клетки IN-NL-GFPΔEnv10, производным ВИЧ-1, содержащим делецию в env, инактивирующую мутацию D64V16 в IN и открытую рамку считывания зеленого флуоресцентного белка (GFP) вместо nef. Этот вирус сохраняет неповрежденные копии остальных шести генов ВИЧ-1, включая vpr. Через 48 часов после заражения (hpi) клетки GFP+ собирали методом сортировки клеток с активированной флуоресценцией (FACS), sgRNA выделяли с помощью ПЦР (полимеразная цепная реакция), а затем клонировали в тот же лентивирусный вектор. После трех раундов отбора клеток GFP+ sgRNA секвенировали и анализировали на предмет обогащения по сравнению с исходной библиотекой sgRNA. Как показано на графике вулкана на рис. 1а, мы идентифицировали 9 генов, которые были обогащены> 16-кратно и имели значение P <0,0005. В их число вошли 3 рецептора клеточной поверхности (LY9, OR52N2 и SSTR2) и 1 моторный белок (MYO1B), которые в дальнейшем не анализировались. Этот анализ также выявил 4 из 8 известных компонентов комплекса SMC5/6, а именно SMC5, SMC6, SLF1 и NSMCE3, а также белок репарации ДНК SWI5 (рис. 1a).

16 and P value <0.0005 (delineated by the red lines) are labelled. Briefly, P values for individual sgRNAs were calculated using a negative binomial (NB) model, then sorted sgRNA P values were used to calculate FDR-corrected P values for individual genes using the robust rank aggregation (αRRA) algorithm in MAGeCK-VISPR50,51. Members of the SMC5/6 complex are in green (FDR-corrected P values: SMC5 = 7.8 × 10−7, SMC6 = 0.00033, NSMCE3 = 0.00010, SLF1 = 0.00017). b, Flow cytometry of WT CEM-SS cells and the indicated clonal knockout cell lines at 2 dpi with an IN− NL-GFPΔEnv reporter virus at an MOI of ~0.3. A representative experiment from 3 biological replicates is shown. c,d, Flow cytometry of WT (c) or ΔSMC5 CEM-SS (d) cells at 2 dpi with IN+ NL-GFPΔEnv reporter virus at an MOI of ~0.3. Representative experiments from 3 biological replicates are shown. e–h, Time course of the infection of the parental CEM-SS Cas9 cells, or the ∆SMC5 and ∆SLF2 CEM-SS clones with IN+ or IN− NL-NLuc. e, Live cells. f, Virally encoded NLuc expression. g, Total HIV-1 DNA. h, Total HIV-1 RNA expression quantified at the indicated dpi. All IN+ HIV-1-infected cultures died from viral cytopathicity by 7 dpi. DNA and RNA levels were quantified by qPCR and normalized to IN+ HIV-1-infected CEM-SS Cas9 cells at 1 dpi, which was set to 1. Mean ± s.d. of 3 biological replicates./p>108 colonies when plated to ensure each sgRNA in the library was covered ~1,000× on average. These colonies were collected and the pooled library plasmids extracted using Maxiprep columns (Zymo)./p>